Vše

Co hledáte?

Vše
Projekty
Výsledky výzkumu
Subjekty

Rychlé hledání

  • Projekty podpořené TA ČR
  • Významné projekty
  • Projekty s nejvyšší státní podporou
  • Aktuálně běžící projekty

Chytré vyhledávání

  • Takto najdu konkrétní +slovo
  • Takto z výsledků -slovo zcela vynechám
  • “Takto můžu najít celou frázi”

The Impact of DNA Extraction Methods on Stool Bacterial and Fungal Microbiota Community Recovery

Identifikátory výsledku

  • Kód výsledku v IS VaVaI

    <a href="https://www.isvavai.cz/riv?ss=detail&h=RIV%2F00209775%3A_____%2F19%3AN0000005" target="_blank" >RIV/00209775:_____/19:N0000005 - isvavai.cz</a>

  • Nalezeny alternativní kódy

    RIV/00216224:14110/19:00110423

  • Výsledek na webu

    <a href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6479168/pdf/fmicb-10-00821.pdf" target="_blank" >https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6479168/pdf/fmicb-10-00821.pdf</a>

  • DOI - Digital Object Identifier

    <a href="http://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2019.00821" target="_blank" >10.3389/fmicb.2019.00821</a>

Alternativní jazyky

  • Jazyk výsledku

    angličtina

  • Název v původním jazyce

    The Impact of DNA Extraction Methods on Stool Bacterial and Fungal Microbiota Community Recovery

  • Popis výsledku v původním jazyce

    Our understanding of human gut microbiota in health and disease depends on accurate and reproducible microbial data acquisition. The critical step in this process is to apply an appropriate methodology to extract microbial DNA, since biases introduced during the DNA extraction process may result in inaccurate microbial representation. In this study, we attempted to find a DNA extraction protocol which could be effectively used to analyze both the bacterial and fungal community. We evaluated the effect of five DNA extraction methods (QIAamp DNA Stool Mini Kit, PureLinkTM Microbiome DNA Purification Kit, ZR Fecal DNA MiniPrepTM Kit, NucleoSpin® DNA Stool Kit, and IHMS protocol Q) on bacterial and fungal gut microbiome recovery using (i) a defined system of germ-free mice feces spiked with bacterial or fungal strains, and (ii) non-spiked human feces. In our experimental setup, we confirmed that the examined methods significantly differed in efficiency and quality, which affected the identified stool microbiome composition. In addition, our results indicated that fungal DNA extraction might be prone to be affected by reagent/kit contamination, and thus an appropriate blank control should be included in mycobiome research. Overall, standardized IHMS protocol Q, recommended by the International Human Microbiome Consortium, performed the best when considering all the parameters analyzed, and thus could be applied not only in bacterial, but also in fungal microbiome research.

  • Název v anglickém jazyce

    The Impact of DNA Extraction Methods on Stool Bacterial and Fungal Microbiota Community Recovery

  • Popis výsledku anglicky

    Our understanding of human gut microbiota in health and disease depends on accurate and reproducible microbial data acquisition. The critical step in this process is to apply an appropriate methodology to extract microbial DNA, since biases introduced during the DNA extraction process may result in inaccurate microbial representation. In this study, we attempted to find a DNA extraction protocol which could be effectively used to analyze both the bacterial and fungal community. We evaluated the effect of five DNA extraction methods (QIAamp DNA Stool Mini Kit, PureLinkTM Microbiome DNA Purification Kit, ZR Fecal DNA MiniPrepTM Kit, NucleoSpin® DNA Stool Kit, and IHMS protocol Q) on bacterial and fungal gut microbiome recovery using (i) a defined system of germ-free mice feces spiked with bacterial or fungal strains, and (ii) non-spiked human feces. In our experimental setup, we confirmed that the examined methods significantly differed in efficiency and quality, which affected the identified stool microbiome composition. In addition, our results indicated that fungal DNA extraction might be prone to be affected by reagent/kit contamination, and thus an appropriate blank control should be included in mycobiome research. Overall, standardized IHMS protocol Q, recommended by the International Human Microbiome Consortium, performed the best when considering all the parameters analyzed, and thus could be applied not only in bacterial, but also in fungal microbiome research.

Klasifikace

  • Druh

    J<sub>imp</sub> - Článek v periodiku v databázi Web of Science

  • CEP obor

  • OECD FORD obor

    10606 - Microbiology

Návaznosti výsledku

  • Projekt

  • Návaznosti

    V - Vyzkumna aktivita podporovana z jinych verejnych zdroju

Ostatní

  • Rok uplatnění

    2019

  • Kód důvěrnosti údajů

    S - Úplné a pravdivé údaje o projektu nepodléhají ochraně podle zvláštních právních předpisů

Údaje specifické pro druh výsledku

  • Název periodika

    Frontiers in microbiology

  • ISSN

    1664-302X

  • e-ISSN

  • Svazek periodika

    10

  • Číslo periodika v rámci svazku

    April 2019

  • Stát vydavatele periodika

    CH - Švýcarská konfederace

  • Počet stran výsledku

    11

  • Strana od-do

    821

  • Kód UT WoS článku

    000464958900001

  • EID výsledku v databázi Scopus

    2-s2.0-85067103238